Detección de Perkinsus marinus en una población silvestre del mejillón “choro” Modiolus capax del suroeste del Golfo de California

Autores

  • Manuel García Ulloa Instituto Politécnico Nacional (IPN)-Departamento de Acuacultura, Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional Unidad (CIIDIR), Unidad Sinaloa, Blvd. Juan de Dios Bátiz Paredes 250, A. P. 280, Guasave, Sinaloa, C.P. 81101, México. Tel/fax: (687) 8729626, ext. 87651.

Palavras-chave:

Baja California Sur, bivalvos, condición sanitaria, diagnóstico de la infección, parasitología

Resumo

Antecedentes. Después de haberse reportado su transfaunación del océano Atlántico, el protozoario Perkinsus marinus ha ampliado su listado de hospederos en varias especies de moluscos del océano Pacífico, tanto en cultivo como de poblaciones silvestres. Objetivos. Se evaluó la presencia de este parásito en el mejillón “choro”, Modiolus capax, en el suroeste del Golfo de California. Métodos. Se colectaron 60 mejillones por estación anual durante un año (verano, otoño, invierno 2019-primavera 2020, n = 240), en el puerto minero de Santa Rosalía (SR), Baja California Sur, México. Se utilizó la tinción con tioglicolato para detectar presuntas hipnosporas y la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para su confirmación. Se obtuvieron la prevalencia, carga parasitaria e intensidad de infección en cada muestreo. Resultados. Se detectaron presuntas hipnosporas del parásito con la tinción de tioglicolato, en casi 20% de las muestras analizadas, de las que sólo el 5% fueron positivas para su confirmación con PCR. Ni la prevalencia (6.66-33.33%) ni la carga parasitaria (˂ 2.75 hipnosporas/g) mostraron una tendencia a aumentar con el tiempo; la intensidad de infección fue de negativa a ligera. La salinidad mostró correlación con la carga parasitaria (r = 0.99, p = 0.002). Conclusiones. Los resultados sugieren que M. capax en SR presentó baja susceptibilidad al parásito, por lo que su salud no se encuentra comprometida al hospedar a P. marinus. Aunque es el primer reporte del protozoario en este mejillón, es recomendable el monitoreo continuo para conocer, no solo el estado sanitario del bivalvo en la región, sino también, de las otras especies de moluscos que ahí habitan.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

Auderman, C., K. S. Reece & E. M. Burreson. 2004. Real-time PCR for detection and quantification of the protistan parasite Perkinsus marinus in environmental waters. Applied Environmental Microbiology 70: 6611-6618. DOI:10.1128/AEM.70.11.6611-6618.2004

Bushek, D. & S. K. Jr. Allen. 1996. Races of Perkinsus marinus. Journal of Shellfish Research 15:103-7.

Bushek, D., S.E. Ford & S.K. Allen. 1994. Evaluation of methods using ray’s fluid thioglycollate medium for diagnosis of Perkinsus marinus infection in the eastern oyster, Crassostrea virginica. Annual Review of Fish Diseases 4:201–217.

Cáceres-Martínez, J. & R. Vázquez-Yeomans. 2013. Enfermedades, parásitos y episodios de mortalidad de ostiones de importancia comercial en México y sus implicaciones para la producción. Ciencia Pesquera 21:5-48. Cáceres-Martínez, J. & R. Vázquez-Yeomans. 2014. Manual de buenas prácticas de manejo para el cultivo de moluscos bivalvos. OIRSA-OSPESCA, San Salvador.117 p.

Cáceres-Martínez, J., R. Vásquez-Yeomans, G. Padilla-Lardizábal & M.A. del Río-Portilla. 2008. Perkinsus marinus in pleasure oyster Crassostrea corteziensis from Nayarit, Pacific coast of Mexico. Journal of Invertebrate Pathology 99:66-73. DOI:10.1016/j.jip.2008.03.005

Cáceres-Martínez, J., M. García-Ortega, R. Vázquez-Yeomans, T.J. Pineda-García, N.A. Stokes & R.B. Carneige. 2012. Natural and cultured populations of the mangrove oyster Saccostrea palmula from Sinaloa, Mexico, infected by Perkinsus marinus. Journal of Invertebrate Pathology 110:321-325. DOI:10.1016/j.jip.2012.03.019

Cáceres-Martínez, J., L.H. Madero-López, G. Padilla-Lardizábal & R. Vásquez-Yeomans. 2016. Epizootiology of Perkinsus marinus, parasite of the pleasure oyster Crassostrea corteziensis, in the Pacific coast of Mexico. Journal of Invertebrate Pathology 139:12-18. DOI:10.1016/j.jip.2016.07.003

Cáceres-Martínez, J., R. Vásquez-Yeomans, P. Danigo & C. Reyes-Roel. 2018. Histological alterations in Pacific oysters Crassostrea gigas that survived a summer mortality event in Baja California, Mexico. Journal of Aquatic Animal Health 30:3138. DOI:10.1002/aah.10006

Cadena-Cárdenas, L., L. Méndez-Rodríguez, T. Zenteno-Savín, J. García-Hernández & B. Acosta-Vargas. 2009. Heavy metal levels in marine mollusks from areas with, or without, mining activities along the Gulf of California, Mexico. Archives of Environmental Contamination and Toxicology 57:96-102. DOI:10.1007/s00244-008-9236-0

Coan, E.V. & P. Valentich-Scott. 2012. Bivalve seashells of tropical west America: marine bivalve mollusks from Baja California to northern Peru (I). Santa Barbara Museum of Natural History, California. 1223 p.

Dantas-Neto, M.P., R. Maggioni, L.F.F. Nogueira, J.M. Forte, R.G. Feijó & R.C. Sabry. 2020. Perkinsus sp. infecting three important mollusks from Jaguaribe River estuary, Ceará, Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science 57(1):e158316. DOI:10.11606/ issn.1678-4456.bjvras.2020.158316

Dungan, C.F. & K.S. Reece. 2020. ASF Fish Health Section. SECTION 1-DIAGNOSTIC. Diagnostic Procedures for Finfish and Shellfish Pathogens. Chapter 5. Perkinsus spp. Infections of Marine Molluscs. Available online at: https://units.fisheries.org/fhs-fish-health-section-blue-book-2016/section-1-diagnostic/ (consultado el 20 marzo 2021).

Ek-Huchim, J.P., M.L. Aguirre-Macedo, M. Améndola-Pimenta, V.M. Vidal-Martínez, J.A. Pérez-Vega, R. Simá-Alvarez, I. Jiménez-García, R. Zamora-Bustillos & R. Rodríguez-Canul. 2017. Genetic signature analysis of Perkinsus marinus in Mexico suggests possible translocation from the Atlantic Ocean to the Pacific coast of Mexico. Parasites & Vectors 10:372. DOI:10.1186/s13071-017-2304-4

Enríquez-Espinoza, T., J.M. Grijalva-Chon, R. Castro-Longoria, J. Ramos-Paredes. 2010. Perkinsus marinus in Crassostrea gigas in the Gulf of California. Diseases of Aquatic Organisms 89:269-273. DOI:10.3354/ dao02199

Enríquez-Espinoza, T.L., R. Castro-Longoria, F. Mendoza-Cano & J.M. Grijalva-Chon. 2015. Perkinsus marinus in Crassostrea gigas and Chione fluctifraga from Kino Bay, Sonora, Mexico. Biotecnia 17:10-13.

Escobedo-Fregoso, C., J. Ramírez-Salcedo & R. Vázquez-Juárez. 2017. Host response when Perkinsus marinus infection intensities increase in the oyster Crassostrea corteziensis. Journal of Shellfish Research 36(3):717-727. DOI:10.2983/035.036.0321

Frías-Espericueta, F.E., M. Aguilar-Juárez, I. Osuna-López, S. Abad-Rosales, G. Izaguirre-Fierro & D. Voltolina. 2011. Los metales y la camaronicultura en México. Hidrobiológica 21:217-228.

García-Corona, J.L., C. Rodríguez-Jaramillo, P.E. Saucedo, J.A. LópezCarvallo, G.F. Arcos-Ortega & J.M. Mazón-Suástegui. 2018. Internal energy management associated with seasonal gonad development and oocyte quality in the horsemussel Modiolus capax (Bivalvia: Mytilidae). Journal of Shellfish Research 37(3):475-483. DOI:10.2983/035.037.0302

García-Domínguez, F.A., L. Carvalho-Saucedo & N. Vélez-Arellano. 2018. Reproductive cycle of two Modiolus capax (Bivalvia: Mytilidae) beds at different depths at Ensenada de la Paz, Gulf of California, Mexico. Hidrobiológica 28(3): 313-323.

Garza-Aguirre, M.C. & L.F. Bückle-Ramírez. 1989. Ciclo reproductivo del mejillón Modiolus capax (Conrad, 1873) (Bivalvia, Mytilidae, Amisomyaria) en la Bahía de los Ángeles, Baja California, México. Anales del Instituto de Ciencias del Mar y Limnología 16(1):157-170.

Gignoux-Wolfsohn, S.A., M.S.S. Newcomb, G.M. Ruiz & K.M. Pagenkopp Lohan. 2020. Environmental factors drive release of Perkinsus marinus from infected oysters. Parasitology 148(5):532-538. DOI:10.1017/ s0031182020002383

Góngora-Gómez, A.M., F. Rubio-Zepeda, L.C. Villanueva-Fonseca, E. ÁlvarezDagnino, N.P. Muñoz-Sevilla, J.A. Hernández-Sepúlveda & M. García-Ulloa. 2016. Primer registro de Perkinsus sp. (Protozoa, Apicomplexa) en el callo de hacha Atrina maura en Sinaloa, México. Revista de Biología Marina y Oceanografía 51(3):689-694. DOI:10.4067/S0718- 19572016000300020

Góngora-Gómez, A.M., P.A. Sandoval-Rivera, L.C. Villanueva-Fonseca, M. López-Meyer, J.C. Sainz-Hernández, L.G. Espinosa-Alonso, D.C. Escobedo-Urías, J.A. Hernández-Sepúlveda, H. Rodríguez-González & M. García-Ulloa. 2019a. Prevalencia de Perkinsus sp. (Apicomplexa) en la almeja chocolata Megapitaria squalida de la costa central de Sinaloa, México. Hidrobiológica 29(3):129-136. DOI:10.24275/uam/izt/ dcbs/hidro/2020v29n3/Gongora

Góngora-Gómez, A.M., J.F. Arzola-González, L.C. Villanueva-Fonseca, F. Sotelo-López, J.A. Hernández-Sepúlveda & M. García-Ulloa. 2019b. Presuntas hipnosporas de Perkinsus sp. en la almeja Megapitaria squalida del golfo de California. Aquatechnica 1:47-52. DOI:10.33936/ at.v1i1.2152

Góngora-Gómez, A.M., F. Rubio-Zepeda, A. Santamaría-Miranda, B.P. Villanueva-Fonseca, A.L. Domínguez-Orozco, L.C. Villanueva-Fonseca, J.A. Hernández-Sepúlveda, H. Rodríguez-González, L.G. Espinosa-Alonso & M. García-Ulloa. 2019c. Perkinsus sp. on Crassostrea gigas performance cultivated in the southeastern Gulf of California. Revista Bio Ciencias 6:e681. DOI:10.15741/revbio.06.e681

Góngora-Gómez, A.M., L.C. Villanueva-Fonseca, P. Sandoval-Rivera, J.A. Hernández-Sepúlveda, A.L. Domínguez-Orozco, B.P. Villanueva-Fonseca, B.P & M. García-Ulloa. 2020. Reporte de presuntas hipnosporas de Perkinsus sp., en Megapitaria squalida del Golfo de California con la técnica de tinción con tioglicolato. Journal MVZ Cordoba 25(2):e1805. DOI:10.21897/rmvz.1805

Grijalva-Chon, J.M., R. Castro-Longoria, J. Ramos-Paredes, T.L. Enríquez-Espinoza & F. Mendoza-Cano. 2013. Detection of a new OsHV-1 DNA strain in the healthy Pacific oyster, Crassostrea gigas Thunberg, from the Gulf of California. Journal of Fish Diseases 36(11):965- 968. DOI:10.1111/jfd.12028

Grijalva-Chon, J.M., R. Castro-Longoria, T.L. Enríquez-Espinoza, A.N. Maeda-Martínez & F. Mendoza-Cano. 2015. Molecular evidence of the protozoan parasite Marteilia refringens in Crassostrea gigas and Crassostrea corteziensis from the Gulf of California. Latin American Journal of Aquatic Research 43(4):776-780. DOI:10.3856/vol43-issue4-fulltext-16

Itoh, N., Y. Komatsu, K. Maeda, S. Hirase & T. Yoshinaga. 2019. First discovery of Perkinsus beihaiensis in Mediterranean mussels (Mytilus galloprovincialis) in Tokyo Bay, Japan. Journal of Invertebrate Pathology 166:107226. DOI:10.1016/j.jip.2019.107226

La Peyre, M., S. Casas & J. La Peyre. 2006. Salinity effects on viability, metabolic activity and proliferation of three Perkinsus species. Diseases of Aquatic Organisms 71:59-74. DOI:10.3354/dao071059

Marshall, D.A., S.M. Casas, W.C. Walton, F.S. Rikard, T.A. Palmer, N. Breaux, M. K. La Peyre, J. Beseres Pollack, M. Kelly & J.F. La Peyre. 2021. Divergence in salinity tolerance of northern Gulf of Mexico eastern oysters under field and laboratory exposure. Conservation Physiology 9(1):coab065. DOI:10.1093/conphys/coab065

Martínez-García, M.F., J.M. Grijalva-Chon, R. Castro-Longoria, J.E. Chávez-Villalba, T.L. Enríquez-Espinoza, A.N. Maeda-Martínez & E. Peña-Messina. 2017. OsHV-1 and notifiable protozoa in healthy Crassostrea corteziensis cultured in two distant areas of the Gulf of California. Latin American Journal of Aquatic Research 45(4):699-707. DOI:10.3856/vol45-issue4-fulltext-6

Morley, N.J. 2010. Interactive effects of infectious diseases and pollution in aquatic molluscs. Review. Aquatic Toxicology 96:27-36. DOI:10.1016/j.aquatox.2009.09.017

Muñoz-Barbosa, A. & M.A. Huerta-Díaz. 2013. Trace metals enrichment in nearshore sediments and accumulation in mussels (Modiolus capax) along the Eastern coast of Baja California, Mexico: Environmental status in 1995. Marine Pollution Bulletin 77:71-81. DOI:10.1016/j.marpolbul.2013.10.030

Muñoz-Sevilla, N.P., B.P. Villanueva-Fonseca, A.M. Góngora-Gómez, M. García-Ulloa, A.L. Domínguez-Orozco, R. Ortega-Izaguirre & L.E. Campos-Villegas. 2017. Heavy metal concentrations in diploid and triploid oysters (Crassostrea gigas) from three farms on the north-central coast of Sinaloa, Mexico. Environmental Monitoring and Assessment 189:536. DOI:10.1007/s10661-017-6223-9

Navarro-Chávez, M.F. 2021. Presencia de Perkinsus sp. en la almeja arenera Chionista fluctifraga (G. B. Sowerby II, 1853) cultivada en la bahía El Colorado, Ahome, Sinaloa. Tesis de Maestría en Ciencias (Recursos Naturales y Medio Ambiente), Centro Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional Unidad Sinaloa, IPN. Sinaloa, México. 51 p.

NOM (Norma Oficial Mexicana). 1993. NOM-031-SSA1-1993. Bienes y servicios. Productos de la pesca. Moluscos bivalvos fresco-refrigerados y congelados. Especificaciones sanitarias. Disponible en línea en: http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=468071&fecha=24103/1994&print=true (consultado el 01 febrero 2021).

OIE (Organización Mundial de Sanidad Animal). 2019. Manual de las Pruebas de Diagnóstico para Animales Acuáticos. Capítulo 2.5.6 Infección por Perkinsus marinus. Disponible en línea en: https://www.oie. int/fileadmin/Home/esp/Health_standards/aahm/current/chapitre_ perkinsus_marinus.pdf. (consultado el 15 enero 2021).

Olguín-Quiñones, O. 1976. Catálogo de especies marinas de importancia comercial en Baja California Sur. S.I.C./Subsecretaría de Pesca. México. Instituto Nacional de Pesca. 177 p. Disponible en línea en: https://www.inapesca.gob.mx/portal/Publicaciones/Catalogos/1976-Holguin-Catalogo-especies-comerciales-en-BCS.pdf?- download (consultado el 15 de junio 2021).

Petty, D. 2010. Perkinsus infections in bivalve mollusks. Fisheries and Aquatic Sciences Department, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. Available online at: http://edis.ifas.ufl.edu. (consultado el 03 febrero 2021).

Pinho-Ferreira, L., R.C. Sabry, P.M. da Silva, T.C.V. Gesteira, L. de Souza Romão, M.P. Paz & R. Maggioni, R. 2015. First report of Perkinsus beihaiensis in wild clams Anomalocardia brasiliana (Bivalvia: Veneridae) in Brazil. Experimental Parasitology 150:67-70. DOI:10.1016/j. exppara.2014.07.012

Ramos-Queiroga, F., L.F. Marques-Santos, I. Almeida de Medeiros & P.M. da Silva. 2016. Effects of salinity and temperature on in vitro cell cycle and proliferation of Perkinsus marinus from Brazil. Parasitology 143:475-487. DOI:10.1017/S0031182015001602

Ray, S.M. 1966. A review of the culture method for detecting Dermocystidium marinus, with suggested modifications and precautions. Proceedings of the National Shellfish Association 54(1):55-69.

Reece, K.S., C.F. Dungan & E.M. Burreson. 2008. Molecular epizootiology of Perkinsus marinus and P. chesapeaki infections among wild oysters and clams in Chesapeake Bay, USA. Diseases of Aquatic Organisms 82:237-248. DOI:10.3354/dao01997

Renault T., C. Lipart & I. Arzul. 2001. A herpes-like virus infecting Crassostrea gigas and Ruditapes philippinarum larvae in France. Journal of Fish Diseases 24: 369-376. DOI:10.1046/j.1365- 2761.2001.00300.x

Roldán-Wong, N.T., A.K. Kidd, A.J. Marmolejo-Rodríguez, E. Shumilin, B.P. Ceballos-Vázquez & M. Arellano-Martínez. 2018. Bioaccumulation and biomagnification of potentially toxic elements in the octopus Octopus hubbsorum from the Gulf of California. Marine Pollution Bulletin 129:458-468. DOI:10.1016/j.marpolbul.2017.10.014

Romero-Gil, J.M. 1991. El Boleo de Santa Rosalía B. C. S. Un pueblo que se negó a morir. Coedición de la Universidad de Sonora. Consejo Editorial del Gobierno del Estado de Baja California Sur y Centro de Estudios Mexicanos y Centroamericanos. Embajada de Francia en México. 436 p.

Shumilin, E., A. Jiménez-Illescas & S. López-López. 2013. Anthropogenic contamination of metals in sediments of the Santa Rosalía Harbor, Baja California Peninsula. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology 90:333-337. DOI:10.1007/s00128-012-0923-1

Smits, M., F. Enez, S. Ferraresso, G. Dalla Rovere, E. Vetois, J.-F. Auvray, L. Genestout, R. Mahla, G. Arcangeli, C. Paillard, P. Haffray & L. Bargelloni. 2020 Potential for genetic improvement of resistance to Perkinsus olseni in the Manila clam, Ruditapes philippinarum, using DNA parentage assignment and mass spawning. Frontiers of Veterinary Sciences 7:579840. DOI:10.3389/fvets.2020.579840

Thrusfield, M. 1995. Veterinary epidemiology. Black-Well Publishing, Ames Iowa, 593 p.

Villalba, A., K.S. Reece, M.C. Ordás, S.M. Casas & A. Figueras. 2004. Perkinsosis in mollusks: a review. Aquatic Living Resources 17:411-432. DOI:10.1051/alr:2004050

Villanueva-Fonseca, L.C. & C.M. Escobedo-Bonilla. 2013. Prevalencia del protozoario Perkinsus sp. en un cultivo de ostión japonés Crassostrea gigas en Sinaloa, México. Latin American Journal of Aquatic Research 41:996-1002. DOI:103856/vol41-issue5-fulltext-19

Villanueva-Fonseca, L.C., M. García-Ulloa, M. López-Meyer, B.P. Villanueva-Fonseca, J.A. Hernández-Sepúlveda, N.P. Muñoz-Sevilla & A.M. Góngora-Gómez. 2020. Perkinsus marinus in the pleasure oyster Crassostrea corteziensis cultivated on the southeast coast of the Gulf of California, Mexico. Latin American Journal of Aquatic Research 48(4):529-537. DOI:10.3856/vol48-issue4-fulltext-2463

Vivanco, M.S., A.A. Valera, L.A. Llanco & E. Serrano-Martínez. 2020. Evaluación molecular de la presencia de Perkinsus spp en muestras de concha de abanico (Argopecten purpuratus) del norte del Perú. Revista de Investigaciones Veterinarias de Perú 31(4): DOI:10.15381/ rivep.v31i4.19044

Xin, L., Ch. Li, Ch. Bai & Ch. Wang. 2018. Ostreid Herpesvirus-1 infects specific hemocytes in ark clam, Scapharca broughtonii. Viruses 10(10):529. DOI:10.3390/v10100529

Yee-Duarte, J.A., B.P. Ceballos-Vázquez, E. Shumilin, K. Kidd & M. Arellano-Martínez. 2017. Evidence of health impairment of Megapitaria squalida (Bivalvia: Veneridae) near the “hot spot” of a minig port, Gulf of California. Hidrobiológica 27(3):391-398.

Yee-Duarte, J.A., B.P. Ceballos-Vázquez, M. Arellano-Martínez, M.A. Camacho-Mondragón & E. Uría-Galicia. 2018. Histopathological alterations in the gonad of Megapitaria squalida (Mollusca: Bivalvia) inhabiting a heavy metal polluted environment. Journal of Aquatic Animal Health 30:144-154. DOI:10.1002/aah.10015

Yee-Duarte, J.A., I.S. Racotta, M.A. Camacho-Mondragón, N.T. Roldán-Wong, D.P. Carreño-León, E. Shumilin, K.A. Kidd & M. Arellano-Martínez. 2020. Contrasting reproductive health of female clams Megapitaria squalida from two nearby metal-polluted sites in the Gulf of California: Potential effects of cooper, lead, and cobalt. Marine Pollution Bulletin 160:111583. DOI:10.1016/j.marpolbul.2020.111583

Publicado

2022-02-04

Como Citar

García Ulloa, M. (2022). Detección de Perkinsus marinus en una población silvestre del mejillón “choro” Modiolus capax del suroeste del Golfo de California. HIDROBIOLÓGICA, 31(3). Recuperado de https://hidrobiologica.izt.uam.mx/index.php/revHidro/article/view/1595

Edição

Seção

Artículos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)