Producción de pólipos clonales del organismo modelo Exaiptasia diaphana (Rapp, 1829)

Autores/as

  • Jacqueline Rivera-Ortega 1 Posgrado en Ciencias del Mar y Limnología, Universidad Nacional Autónoma de México
  • Patricia E. Thomé Molecular Microbiology Laboratory, Unidad Académica de Sistemas Arrecifales Puerto Morelos, Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, Universidad Nacional Autónoma de México

Palabras clave:

Aiptasia, laceración pedal, organismo modelo, pólipos clonales

Resumen

Antecedentes. La anémona marina Exaiptasia diaphana (Orden Actiniaria) es un organismo modelo ideal para estudiar procesos biológicos, fisiológicos e inmunitarios en corales (Orden Scleractinia), debido a su estrecha relación filética y sus rasgos compartidos. E. diaphana tiene una distribución amplia en las zonas tropicales costeras. Esta especie es fácil de mantener en acuarios bajo diversas condiciones experimentales, ya que se reproduce asexualmente y puede transformarse en aposimbiótica. Sin embargo, los métodos de propagación son diversos, lo que dificulta la comparación directa de resultados. Un protocolo estandarizado de propagación de E. diaphana puede contribuir a mejorar el entendimiento de su biología. Objetivo. Determinar el método más rápido de producción de pólipos clonales en condiciones controladas. Resultados. En el tratamiento de micro laceración, el 50% del tejido remanente dio lugar a un nuevo pólipo clonal, mientras que cada anémona amputada formó dos pólipos con tentáculos y pie desarrollados. Los pólipos clonales amputados desarrollaron tentáculos a partir del tercer día, mientras que los pies del grupo control y el tejido remanente de la micro laceración desarrollaron tentáculos a partir del sexto día. El grupo control liberó naturalmente cinco pólipos con tentáculos bien desarrollados en los diez días del experimento. Conclusión. La amputación transversal fue el método más rápido para obtener pólipos clonales desarrollados, por lo que se propone como método estándar para la propagación artificial eficiente de pólipos clonales del organismo modelo E. diaphana.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Baumgarten, S., O. Simakov, L. Y. Escherick & C. R. Voolstra. 2015. The genome of Aiptasia, a sea anemone model for coral symbiosis. The Proceedings of the National Academy of Sciences. 112(38):11893- 11898. DOI: 10.1073/pnas.1513318112

Cary, L. R. 1911. A study of pedal laceration in actinians. The Biological Bulletin. 20(2): 81-106.

Cook, C. B., C. F. D’Elia & G. Muller-Parker. 1998. Host feeding and nutrient sufficiency for zooxanthellae in the sea anemone Aiptasia pallida. Marine Biology. 98:253-262. DOI: 10.1007/BF00391203

Costa-Leal, M., C. Nunes, S. Engrola, M. T. Dinis & R. Calado. 2012. Optimization of monoclonal production of the glass anemone Aiptasia pallida (Agassiz in Verrill, 1964). Aquaculture. 354-355:91-96. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2012.03.035

Dungan, A. M., L. M. Hartman, G. Tortorelli, R. Belderok, A. M. Lamb, L. Pisan, G. I. McFadden, L. L. Blackall & J. van Oppen. 2020. Exaiptasia diaphana from the great barrier reef: a valuable resource for coral symbiosis research. Symbiosis. 80:195-206. DOI: 10.1007/ s13199-020-00665-0

Grawunder, D., E. A. Hambleton, M. Bucher, I. Wolfowicz, N. Bechtoldt & A. Guse. 2015. Induction of gametogenesis in the Cnidarian endosymbiosis model Aiptasia sp. Scientific Reports. 5, 15677. DOI: 10.1038/srep15677

Hambleton, E. A., A. Guse & J. R. Pringle. 2014. Similar specificities of symbiont uptake by adults and larvae in an anemone model system for coral biology. Journal of Experimental Biology. 217:1613-9. DOI: 10.1242/jeb.095679

Hoegh-Guldberg O, P.J. Mumby, A. J. Hooten, R. S. Steneck, P. Greenfield, E. Gomez, C. D. Harvell, P. F. Sale, A. J. Edwards, K. Caldeira, N. Knowlton, C. M. Eakin, R. Iglesias-Prieto,

N. Muthiga, R. H. Bradbury, A. Duby & M. E. Hatziolos. 2007. Coral reefs under rapid climate change and ocean acidification. Science. 318:1737-1742. DOI: 10.1126/science.1152509

Jackson, J. B. C. Jackson, J. B. C. & A. C. Coates. 1986. Life cycles and evolution of clonal (modular) animals. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 313:7-22.

LaJeunesse T. C., J. E. Parkinson, P. W. Gabrielson, H. J. Jeong, J. D. Reimer, C. R. Voolstra & S. R. Santos. 2018. Systematic revision of Symbiodiniaceae highlights the antiquity and diversity of coral endosymbionts. Current Biology. 28:2570-80. DOI: 10.1016/j.cub.2018.07.008

Lam, J., Y. W. Cheng, W. N. U. Chen, H. H. Li, C. S. Chen & S. E. Peng. 2017. A detailed observation of the ejection and retraction of defense tissue acontia in sea anemone (Exaiptasia pallida). PeerJ. 5: e2996. DOI: 10.7717/peerj.2996

Presnell, J. S., E. Wirsching & V. M. Weis. 2022. Tentacle patterning during Exaiptasia diaphana pedal lacerate development differs between symbiotic and aposymbiotic animals. PeerJ. 10: e12770. DOI: 10.7717/peerj.12770

Schlesinger, A., E. Kramarsky-Winter, H. Rosenfeld, R. Armoza-Zvoloni & Y. Loya. 2010. Sexual plasticity and self-fertilization in the sea anemone Aiptasia diaphana. PLoS ONE. 5(7): e11874. DOI: 10.1371/ journal.pone.0011874

Sunagawa S., E. C. Wilson, M. Thaler, M. L. Smith, C. Caruso, J. R. Pringle, V. M. Weis, M. Medina, & J. A. Schwarz. 2009. Generation and analysis of transcriptomic resources for a model system on the rise: the sea anemone Aiptasia pallida and its dinoflagellate endosymbiont. BMC Genomics. 10: 258

Thornhill, D. J., Y. Xiang, D. T. Pettay, M. Zhong & S. R. Santos. 2013. Population genetic data of a model symbiotic cnidarian system reveal remarkable symbiotic specificity and vectored introductions across ocean basins. Molecular Ecology. 22:4499-4515. DOI: 10.1111/ mec.12416

van der Burg, C. A., A. Pavasovic, E. K. Giliding, E. S. Pelzer, J. M. Surm, H. L. Smith, T. P. Walsh & P. J. Prentis. 2020. The rapid regenerative response of a model sea anemone species Exaiptasia pallida is characterised by tissue plasticity and highly coordinated cell communication. Marine Biotechnology. 22:285-307. DOI: 10.1007/ s10126-020-09951-w

Voolstra, C. R. 2013. A journey into the wild of the cnidarian model system Aiptasia and its symbionts. Molecular Ecology. 22: 4366-4368. DOI: 10.1111/mec.12464

Weis, V. M., S. K. Davy, O. Hoegh-Guldberg, M. Rodriguez-Lanetty & J. R. Pringle. 2008. Cell biology in model systems as the key to understanding corals. Trends in Ecology & Evolution. 23:369-376. DOI: 10.1016/j.tree.2008.03.004

Yellowless, D., T. A. V. Rees & W. Leggat W. 2008. Metabolic interactions between algal symbionts and invertebrate hosts. Plant, Cell & Environment. 31:679-694. DOI: 10.1111/j.1365-3040.2008.01802.x

Descargas

Publicado

2023-05-30

Cómo citar

Rivera-Ortega, J., & Thomé, P. E. (2023). Producción de pólipos clonales del organismo modelo Exaiptasia diaphana (Rapp, 1829). HIDROBIOLÓGICA, 33(2). Recuperado a partir de https://hidrobiologica.izt.uam.mx/index.php/revHidro/article/view/1735

Número

Sección

Nota Científica